Dalam beberapa tahun terakhir, penyakit antraknosa (bercak hitam, titik hitam) yang disebabkan oleh jamur Colletotrichum coccodes, telah menyebar di daerah utama penanaman kentang. Produsen dan peneliti telah lama menganggapnya sebagai penyakit ringan yang tidak terlalu penting. Namun meningkatnya bahaya yang terjadi dengan latar belakang meningkatnya persyaratan kualitas umbi-umbian baik dalam bentuk segar maupun dalam industri pengolahan telah menjadikan antraknosa ke dalam kategori penyakit penting secara ekonomi yang menyebabkan kerugian ekonomi yang signifikan. Menurut publikasi ilmiah (Kuznetsova M.A. et al., 2020), di Rusia hingga sekitar pertengahan tahun 1950-an, antraknosa pada kentang tidak tersebar luas. Kemudian terjadi peningkatan penyakit secara bertahap. Pada tahun 1980–1985, kerusakan tanaman kentang akibat antraknosa berkisar antara 5 hingga 25%, pada tahun 1986–1987 dari 10 hingga 35%, pada musim panas dan kering tahun 1988, kerusakan pucuk berkisar antara 10 hingga 70%, pada tahun 1989 - dari 5 hingga 40%, pada tahun 1990–2000 – dari 3 hingga 35%, pada tahun 2001–2009 – dari 2 hingga 55%, pada musim panas dan kemarau tahun 2010 dari 5 hingga 100%, pada tahun 2011–2019 – dari 3 hingga 65%. Para peneliti sepakat bahwa alasan utama peningkatan bahaya penyakit antraknosa adalah impor bahan benih yang terkontaminasi, penyebaran benih, kerusakan umbi selama budidaya mekanis dan penurunan ketahanan tanaman dengan latar belakang kondisi pertumbuhan yang tidak menguntungkan. Antraknosa secara langsung dapat menurunkan hasil kentang sebesar 12-30%, menurunkan kualitas produk akibat bercak eksternal pada kulit, perubahan warna jaringan internal, dan menyebabkan penurunan daya jual hasil panen selama penyimpanan.
Gejala penyakit antraknosa. Jamur Colletotrichum coccodes dapat muncul pada umbi kentang, stolon, akar, batang dan daun. Pada bagian tanaman di atas tanah, gejala awal penyakit antraknosa muncul berupa daun menguning dan mengering. Pada saat yang sama, batangnya tetap hijau untuk waktu yang lama (foto 1). Antraknosa tidak dapat dideteksi hanya dengan menguningnya daun saja. Pengeringan daun kentang tidak hanya disebabkan oleh antraknosa, sclerotinia, pectobacteria, tetapi juga penyakit hawar cercospora, penyakit hawar alternaria, dan layu verticillium. Sebagai akibat dari manifestasi gabungan dari jenis infeksi baru, pengeringan awal tanaman kentang yang tidak lazim semakin banyak diamati dalam produksi.
Pada paruh kedua musim tanam, penyakit ini menyerang batang. Pertama, bintik-bintik perunggu kecil muncul di tempat menempelnya daun kering (foto 2). Kemudian area yang terkena dampak meluas (foto 3). Selanjutnya, bintik-bintik itu bertambah besar dan lapisan miselium putih muncul di atasnya. Jaringan batang di bawah miselium berubah warna dari perunggu menjadi hitam (foto 4,5). Plak putih pada batang juga disebabkan oleh rhizoctonia, sclerotinia, dan busuk kelabu.
Foto 2,3. Perkembangan antraknosa pada batang
Foto 4,5. Lapisan putih miselium antraknosa pada batang
Bintik-bintik antraknosa juga mempengaruhi zona bawah tanah batang. Warnanya mirip dengan manifestasi rhizoctonia (foto 6). Namun, pada rhizoctonia, tidak seperti antraknosa, batas antara jaringan yang terkena dan jaringan sehat sangat jelas.
Dengan berkembangnya antraknosa lebih lanjut pada bagian bawah tanah tanaman pada lokasi kerusakan batang, stolon, dan akar, permukaannya membusuk, terkelupas dan mudah dipisahkan (foto 7). Saat kelembapan tinggi, kerusakannya berubah warna menjadi ungu muda.
Batang yang rusak mudah dicabut dari tanah. Di tempat infeksi batang, banyak mikrosklerotia hitam terbentuk (foto 8). Oleh karena itu nama bahasa Inggris untuk penyakit ini - titik hitam (black dot). Tapi ini juga bukan gejala eksklusif, sklerotia juga dibentuk oleh verticillium dan busuk putih.
Gejala penyakit antraknosa pada umbi-umbian sangat bervariasi. Awalnya bintik-bintik ini berwarna abu-abu dan tidak teratur pada kulitnya. Selama penyimpanan, warna keperakan muncul (foto 9). Berbeda dengan keropeng perak, bintik antraknosa tidak terpisah secara tajam dari kulit yang sehat dan mikrosklerotia terlihat pada bintik tersebut (foto 10). Bintik hitam khas dengan bintik coklat keperakan muncul pada permukaan umbi dengan jenuhnya mikrosklerotia kecil berwarna hitam di seluruh jaringan yang sakit. Umbi yang terkena dampak parah berkerut, kulit mudah terkelupas dari permukaan, di mana sklerotia kecil juga terbentuk. Permukaan umbi tidak rata dan bergelombang. Pada potongan umbi yang terkena, jaringan berwarna coklat dapat ditelusuri hingga kedalaman 0.5-0.8 cm, lama kelamaan muncul bintik-bintik keras yang tertekan. Selama inkubasi jangka panjang dalam kondisi penyimpanan, gejala penyakit menyebar ke seluruh umbi, jaringan menangis, pembentukan lendir dan kehancuran total umbi-umbian tersebut muncul.
Foto 9. Gejala dan sklerotia penyakit antraknosa pada umbi-umbian
Dengan perkembangan antraknosa yang kuat, bintik-bintik tertekan, pecahnya kulit, kerusakan gelap pada cincin pembuluh darah dan daging umbi dicatat, yang agak berbeda dari penyakit umbi lainnya (penyakit busuk daun, phomosis, fusarium, ditylenchosis), tetapi tidak secara unik. Gejala visual pada tahap ini tidak cukup untuk mengidentifikasi patogen (foto 11).
Sumber penularan dan faktor berkembangnya penyakit antraknosa. Infeksi kentang dengan C. coccodes dapat disebabkan oleh inokulum tanah, umbi dan udara. Inokulum tanah biasanya lebih berbahaya dibandingkan inokulum umbi. Di dalam tanah, jamur dapat hidup sebagai sklerotia atau konidia pada tingkat yang tidak terdeteksi. Sebelumnya, sklerotia diyakini dapat bertahan hidup di dalam tanah selama lebih dari 4 tahun, saat ini ada klaim bahwa periode tersebut telah ditingkatkan menjadi 8-15 tahun. Patogen ini melewati musim dingin dalam bentuk sklerotia pada permukaan umbi yang terserang, pada sisa-sisa tanaman dan di dalam tanah. Di musim semi, spora terbentuk pada sisa-sisa tanaman, umbi-umbian dan menyebar dengan tetesan air ke dalam tanah dan tanaman. Selama musim panas, spora berkecambah dalam kelembapan cair dan mampu menginfeksi seluruh bagian tanaman. Infeksi ulang tanaman terjadi berkali-kali sepanjang musim, spora disebarkan oleh angin, serangga, dan tetesan air hujan. C. coccodes sering menyerang batang kentang dan jaringan lain pada awal musim tanam, namun gejala klorosis dan nekrosis daun, serta tanda-tanda patogen berupa sklerotia, seringkali baru muncul pada akhir musim tanam.
Umbi bibit yang terinfeksi biasanya merupakan sumber awal infeksi tanah dan merupakan sumber infeksi penting bagi akar, stolon, dan umbi anak. Setiap bagian permukaan umbi dapat terinfeksi C. coccodes dan hal ini selanjutnya dapat menyebabkan infeksi pada batang. Tidak mungkin mendeteksi semua serangan sekaligus, karena jamur mungkin menempati sebagian kecil permukaan atau berada di dalam umbi. Benih yang tidak menunjukkan tanda-tanda C. coccodes dapat terinfeksi. Jamur secara bertahap menjajah tanah dari bahan benih, menjauh dari umbi yang terinfeksi dengan kecepatan 1 mm per hari. Infeksi pada benih induk mempunyai dampak permanen pada infeksi pada keturunannya, dan infeksi dari benih induk ini dimulai segera setelah penanaman. Umbi benih yang mengalami infeksi luar menghasilkan umbi anak dengan frekuensi dan tingkat keparahan infeksi tertinggi, begitu pula dengan infeksi batang dan jumlah umbi yang terserang pada ujung stolon. Tingkat penyakit serupa juga terjadi pada umbi-umbian dan batang tanaman yang tumbuh dari umbi-umbian yang sehat tetapi dekat dengan umbi-umbian benih yang mengalami infeksi internal atau eksternal. Miselium antraknosa berpindah di dalam tanah dari umbi benih yang terinfeksi ke umbi anak tanaman tetangga. Tidak ada hubungan antara infeksi pada permukaan umbi dengan infeksi internal. Namun semua umbi yang mengalami infeksi internal juga mengalami infeksi eksternal. Infeksi pembuluh darah C. coccodes pada umbi benih menjadi perhatian khusus karena infeksi pembuluh darah tidak mungkin dikendalikan dengan mengobati umbi yang terinfeksi dengan fungisida yang dioleskan pada permukaan umbi.
Apa yang menyebabkan kerusakan – benih yang terkontaminasi, tanah yang terkontaminasi, penularan melalui udara? Hal ini dapat ditentukan oleh beberapa ciri lesi. Lesi yang ditularkan melalui udara mirip dengan penyakit hawar Alternaria, tetapi cincin konsentris tidak terbentuk di dalam lesi. Di daerah yang rentan terhadap badai debu, terdapat risiko tinggi infeksi daun akibat hal ini, karena luka akibat pasir merupakan pintu masuk bagi jamur. Tingginya frekuensi infeksi umbi pada ujung stolon menunjukkan bahwa infeksi primer pada umbi anak terjadi karena masuknya patogen melalui stolon, yaitu. dari umbi induknya. Dalam sebuah penelitian, sebuah ladang ditanami benih yang tampaknya bersih di tanah baru, namun ditemukan bahwa antara 15 dan 88% umbi anakan terkontaminasi.
Apabila sumber utamanya adalah tanah, maka perkembangan mikrosklerotia pada umbi terjadi secara acak pada seluruh permukaan umbi. Gejala bercak hitam muncul dengan frekuensi tinggi pada jaringan akar (60 hingga 90%) pada tanggal penilaian pertama 5 minggu setelah tanam, terlepas dari tingkat inokulum (rendah atau tinggi), namun pada batang di bawah tanah, penyakit ini terlihat tidak signifikan atau sama sekali tidak ada. . Penelitian serupa yang mengamati inokulum yang ditularkan melalui umbi menemukan bahwa gejala pada akar dan stolon dapat dideteksi sekitar waktu munculnya bibit, sedangkan gejala pada batang muncul sekitar 7 hingga 10 minggu setelah inokulasi. Penelitian yang dilakukan dalam kondisi pertumbuhan komersial di Negara Bagian Washington (AS) menunjukkan bahwa C. coccodes muncul paling cepat 15 hari setelah kemunculannya di batang di atas tanah, dan kemudian, 22 hari setelah kemunculannya, di batang bawah tanah; namun, jumlah infeksi yang lebih besar umumnya diisolasi dari batang bawah tanah pada tanggal pengambilan sampel berikutnya.
Dalam uji coba lapangan di Skotlandia, kolonisasi C. coccodes pada jaringan akar yang diperoleh dari tanaman mikropropagasi bebas penyakit serupa dengan kolonisasi akar yang diperoleh dari umbi benih yang bersih secara visual dan cacat ketika dinilai pada awal musim tanam, namun secara signifikan lebih rendah pada akhir musim tanam. tanggal pengambilan sampel. Dalam percobaan di Idaho, kolonisasi jaringan batang oleh C. coccodes di atas dan di bawah tanah lebih tinggi dibandingkan frekuensi kolonisasi stolon dan akar. Tren ini terus berlanjut terlepas dari apakah infeksi tersebut disebabkan oleh kontaminasi tanah, umbi bibit, atau inokulasi daun. Hal ini berbeda dengan penelitian sebelumnya yang menunjukkan bahwa gejala penyakit komedo dapat dideteksi pertama kali pada jaringan akar dibandingkan pada jaringan tanaman lain yang dinilai. Penelitian yang berbeda menilai faktor yang berbeda: tingkat keparahan gejala atau kolonisasi jaringan oleh jamur, yang kemungkinan besar merupakan penyebab perbedaan tersebut. Secara umum diterima bahwa infeksi C. coccodes bersifat laten untuk jangka waktu yang lebih lama pada batang dibandingkan pada akar dan stolon.
Studi yang membandingkan dampak tanah dan benih menunjukkan bahwa infeksi yang ditularkan melalui tanah menyebabkan lebih banyak bintik hitam dibandingkan infeksi yang ditularkan melalui benih. Pada kondisi lapangan di Inggris, tingkat inokulum umbi benih yang bervariasi mengakibatkan peningkatan infeksi antraknosa pada pangkal batang dan akar, namun tidak sebanding dengan tingkat infeksi umbi benih, sedangkan tingkat kontaminasi tanah secara fungsional dapat memprediksi tingkat infeksi antraknosa. Peningkatan jumlah inokulum tanah meningkatkan keparahan penyakit, termasuk nekrosis daun dan klorosis, serta berkembangnya sklerosis pada akar dan batang.
Mengetahui bagaimana lahan terkontaminasi dengan inokulum titik hitam membantu membuat keputusan tentang pemilihan lokasi, penggunaan pengolahan tanah fungisida, atau varietas apa yang akan ditanam di lahan tertentu. Untuk antraknosa, metode pengujian yang tepat telah dikembangkan, berdasarkan analisis DNA PCR, dan hubungan antara tingkat inokulum dalam tanah dan risiko penyakit kentang telah diketahui. Prosedur pengambilan sampel tanah untuk uji antraknosa mirip dengan uji nematoda. DNA target antraknosa diukur dengan PCR dan dinyatakan sebagai pg DNA/g tanah (pg – pikogram atau sepersejuta gram). Hasil pengujian tanah mengkategorikan risiko menjadi rendah (0-100 pg DNA/g tanah), sedang (101-1000 pg DNA/g tanah) dan tinggi (>1000 pg DNA/g tanah) berdasarkan efek tanah yang ditentukan oleh pengujian. kontaminasi pada kentang. Jika nilai ambang batas rendah, risiko tingkat patogenik antraknosa kecil yang akan mempengaruhi daya jual. Jika ambang batasnya tinggi, terdapat risiko tinggi bahwa daya jual sebagian besar umbi-umbian akan berkurang kecuali dilakukan upaya mitigasi risiko (Gambar 13). Namun pola perkembangan antraknosa dalam banyak penelitian ternyata sangat kontradiktif, dan infeksi pada tanah atau bahan benih tidak selalu menyebabkan penurunan hasil dan kualitas umbi. Faktanya adalah bahwa konsekuensi dari infeksi antraknosa pada akhirnya selalu bergantung pada kombinasi unik dari kondisi eksternal dan fitur agroteknik dalam kondisi produksi.
Suhu optimal untuk pertumbuhan hifa C. coccodes adalah 24 оC. Pembentukan sklerotia dan infeksi selanjutnya pada jaringan tanaman terjadi pada rentang suhu yang luas. Gejala tidak terlihat pada umbi pada suhu 15 оC, tetapi pada suhu ini ditemukan banyak batang yang terinfeksi. Aerasi dan cahaya juga mempengaruhi perkecambahan sklerotia. Konidia terbentuk dalam jumlah yang lebih besar pada sklerotia di atas permukaan tanah.
Antraknosa paling sering dikaitkan dengan tanah berpasir ringan, suhu tinggi, dan drainase air yang buruk. Namun, keragaman kerusakan pada tanaman yang mengalami stres menyulitkan untuk mengidentifikasi tren pengaruh faktor abiotik dan biotik terhadap perkembangan penyakit. Di AS, curah hujan berlebihan, irigasi, dan suhu rendah di awal musim yang diikuti dengan kekeringan berkepanjangan menyebabkan penyebaran penyakit ini. Di Inggris, irigasi mengurangi infeksi pada batang, akar dan umbi hingga 18 minggu setelah tanam, namun meningkatkan infeksi pada tahap selanjutnya. Di Israel, dimana semua tanaman diairi secara teratur, kejadian penyakit dan kehilangan hasil telah diamati pada suhu tinggi dan tanah yang relatif kering.
Semua varietas kentang rentan terhadap C. coccodes, tetapi pada tingkat yang berbeda-beda. Penelitian di luar negeri menunjukkan bahwa varietas yang berkulit tipis lebih rentan terserang antraknosa dibandingkan varietas yang berkulit tebal. Terdapat perbedaan yang nyata antar varietas dalam frekuensi kolonisasi batang dan tingkat keparahan kerusakan permukaan umbi. Perbedaan antara serangan batang dan umbi terlihat pada beberapa kultivar, misalnya Desiree memiliki tingkat serangan batang terendah namun merupakan salah satu tingkat serangan umbi tertinggi. Tingkat keparahan infeksi lebih tinggi pada varietas awal karena umbi bersentuhan dengan inokulum tanah dalam jangka waktu yang lebih lama. Variasi yang terjadi pada varietas awal dan akhir menunjukkan adanya pengaruh genetik. Di Federasi Rusia, penelitian terpisah telah dilakukan tentang ketahanan varietas kentang terhadap antraknosa. Misalnya, pemantauan VIZR bahan umbi kategori elit di wilayah Barat Laut menunjukkan bahwa varietas yang paling sedikit terkena antraknosa adalah Gala, Lomonosovsky, Eurasia, Labadiya dan Sudarynya, dan yang paling rentan adalah Nevsky, Red Scarlett, Charodey dan Alouette.
Insiden penyakit antraknosa pada umbi-umbian lebih tinggi pada rotasi tanaman kentang yang dilakukan selama satu hingga tiga tahun. Insiden penyakit antraknosa menurun secara signifikan seiring bertambahnya jarak tanam kentang. C. coccodes ditemukan di lahan tanpa kentang selama 10 dan 15 tahun, namun tingkat infeksi menjadi rendah setelah 6 tahun atau lebih tanpa produksi kentang. Banyak spesies tanaman budidaya dan gulma terkena penyakit antraknosa, bertindak sebagai tanaman inang dan berkontribusi terhadap persistensi infeksi dalam jangka panjang di dalam tanah. Penelitian di luar negeri menunjukkan bahwa ia memiliki beragam inang, yang mencakup setidaknya 58 spesies dan 17 famili, terutama sayuran dari keluarga nightshade - tomat, terong, cabai merah, tembakau. Tapi wortel, bawang bombay, brokoli, selada, bit meja dan gula, lobak, dan sawi kuning juga terpengaruh. Gandum, jagung, kedelai, bunga matahari, sereal, buncis, dan kacang polong tidak mudah terserang penyakit ini. Produk pembusukan yang dikeluarkan oleh beberapa spesies tanaman - tanaman silangan, semanggi manis, lupin, hibrida sorgum-suda - mengurangi pertumbuhan berbagai jenis jamur patogen. Pupuk hijau dengan tanaman biofumigan mengurangi keparahan penyakit antraknosa.
Banyak gulma (black nightshade, field bindweed, white pigweed, Shepherd's purse, common nettle, knotweed, European heliotrope, dll.) dapat menyebabkan peningkatan jumlah inokulum atau dapat berfungsi sebagai sumber inokulum utama untuk kentang. Inokulum C. coccodes bertahan di dalam tanah tidak hanya pada spesies tanaman inang lainnya, tetapi juga pada umbi kentang yang tersisa di lahan setelah panen. Mereka berkecambah tahun depan dan menumpuk banyak penyakit. Umbi kentang kurus tetap dapat bertahan selama beberapa tahun setelah panen awal. Kontrol sukarelawan, mis. kentang sukarelawan sangat penting untuk mengurangi jumlah inokulum antraknosa primer di dalam tanah.
Stres tanaman yang disebabkan oleh kekurangan atau ketidakseimbangan unsur hara juga dapat meningkatkan kolonisasi antraknosa pada akar kentang. Dalam percobaan terkontrol, nitrogen disuplai pada 5, 40, 160, dan 640 ppm untuk menginduksi defisiensi nitrogen dan stres nitrogen berlebih pada tanaman. Tanaman berakar diinokulasi dengan suspensi spora C. coccodes. Kolonisasi sistem akar paling besar terjadi pada tingkat nitrogen terendah (5 ppm). Kolonisasi akar menurun dengan meningkatnya konsentrasi nitrogen menjadi 160 ppm, yang merupakan kadar N optimal, dan kemudian meningkat dengan meningkatnya nitrogen menjadi 640 ppm. Saat pengujian kalium, kolonisasi akar terbesar terjadi pada kadar kalium terendah (0 mg K) dan menurun seiring dengan peningkatan konsentrasi kalium hingga 80 mg K (tingkat K optimal), dan kemudian meningkat sedikit seiring dengan peningkatan konsentrasi kalium hingga 160 mg K. Sama pola juga diamati saat menguji fosfor. Kolonisasi akar terbesar terjadi pada kadar P terendah (0,032 mL) dan kemudian menurun seiring dengan meningkatnya konsentrasi P hingga kadar P optimal (1,00 mL). Oleh karena itu, akar kentang dikolonisasi lebih intensif oleh jamur titik hitam ketika tanaman mengalami stres akibat kekurangan dan kelebihan nitrogen, kalium, dan fosfor dibandingkan ketika tanaman memiliki tingkat optimal setiap unsur hara yang tersedia.
Mengairi kentang setelah bagian atas kentang mengering meningkatkan frekuensi dan tingkat keparahan kerusakan umbi akibat antraknosa setidaknya dua kali lipat. Tingkat keparahan infeksi umbi dan jumlah umbi yang terserang di ujung stolon jauh lebih tinggi pada umbi yang tumbuh dari tanaman yang mendapat air di bagian atas dibandingkan dengan yang berasal dari tanaman yang memiliki air di bawah. Air yang mengalir melalui tanah berperan penting dalam memindahkan inokulum dari benih umbi yang terinfeksi ke umbi anak.
Penelitian juga menunjukkan bahwa kejadian dan tingkat keparahan penyakit antraknosa meningkat pada umbi yang tidak dicuci bila disimpan pada suhu 15 оC dibandingkan dengan 5 оC dan bahwa pemanenan dini dan penyimpanan kering umbi-umbian dapat mencegah atau mengurangi terjadinya penyakit. Perkembangan bintik hitam pada umbi dapat diminimalkan bila tanaman segera didinginkan dibandingkan dengan umbi yang disimpan pada suhu 12°C selama 10 hari sebelum pendinginan. Namun, penting untuk mengeringkan tanaman dengan benar untuk menghindari pembusukan. Selama penyimpanan jangka panjang, tidak ada perbedaan munculnya penyakit pada umbi yang disimpan pada suhu 2,5°C dan 3,5°C.
Pilihan pengelolaan antraknosa kentang terdiri dari penggunaan teknik pencegahan dan perlindungan dengan fungisida. Salah satu prinsip terpenting pengendalian bintik hitam adalah mengurangi jumlah inokulum di dalam tanah melalui efek rotasi tanaman, menghilangkan sisa tanaman, kentang kurus dan gulma. Bahkan rotasi tanaman yang paling lama dengan tanaman bukan inang (misalnya biji-bijian, kedelai, atau jagung) tidak sepenuhnya memperbaiki kondisi tanah (karena mikrosklerotia antraknosa bertahan di lahan hingga 8-15 tahun), namun hal ini menurunkan tingkat inokulum. beberapa kali.
Untuk mencegah dan mengurangi kejadian penyakit ini, perlu dilakukan upaya-upaya sebagai berikut:
1. Pemilihan varietas yang mempunyai ketahanan tinggi terhadap antraknosa, menghindari penanaman varietas rentan pada lahan tertular;
2. Gunakan benih bersertifikat dari produsen terkemuka dan uji benih tersebut di lapangan atau di penyimpanan sebelum dibeli. Hindari benih yang terkontaminasi dari varietas yang lebih rentan. Peraturan sertifikasi benih kentang di semua negara saat ini tidak mengatur peraturan tentang antraknosa, karena tidak ada hubungan langsung antara kerusakan pada umbi induk dan perkembangan infeksi pada umbi anak. Studi sampel dengan gejala antraknosa pada daun yang dilakukan di Federasi Rusia dengan menggunakan metode PCR menunjukkan bahwa dari 96 sampel, hanya 5 yang terkena antraknosa. Namun, di AS dan Inggris, kejadian C. coccodes pada umbi benih bersertifikat masing-masing berkisar antara 0 hingga 90% dan 0 hingga 75%. Benih impor yang terkontaminasi adalah saluran utama penyebaran antraknosa ke wilayah penanaman kentang di Federasi Rusia;
3. Uji benih C. coccodes untuk menentukan kebutuhan perlakuan fungisida. Jangan menanam benih yang terinfeksi di lahan yang bersih dan bebas antraknosa;
4. Hindari menanam kentang di tanah yang memiliki drainase buruk;
5. Melakukan pengolahan tanah dasar pada papan cetakan memastikan penggabungan mendalam sisa-sisa tanaman dan penguraiannya;
6. Pemberian pupuk yang seimbang dan cukup;
7. Hindari penyiraman yang berlebihan, terutama varietas yang rentan dan masaknya terlambat. Mengurangi jumlah air antara pengeringan dan pemanenan
8. Pemanenan umbi sesegera mungkin setelah bagian atas kering;
9. Pendinginan kentang yang cepat dalam penyimpanan. Kontrol suhu dan kelembaban yang tepat selama penyimpanan. Suhu tinggi dan kondensasi pada permukaan umbi berkontribusi terhadap penyakit;
10. Biofumigasi tanah dengan pupuk hijau sawi putih, lobak biji minyak, semanggi manis, hibrida sorgum-suda.
Jika infeksi antraknosa terdeteksi pada umbi dan tanah, fungisida khusus harus digunakan.
Perlindungan kimia terhadap antraknosa. Untuk waktu yang lama, fungisida dengan azoxysrobin adalah satu-satunya cara untuk mengendalikan infeksi tanah. Dalam berbagai percobaan, azoxystrobin yang diaplikasikan melalui alur pada saat penanaman atau dimasukkan ke dalam tanah telah menunjukkan penurunan antraknosa secara konsisten. Perawatan ini menunda perkembangan penyakit selama beberapa minggu. Karena azoxystrobin merupakan strobirulin (FRAC kelas 11), yang mampu menimbulkan resistensi yaitu resistensi patogen di dalamnya, topik ini dibahas secara aktif, terutama oleh produsen produk perlindungan tanaman pesaing.
Saat ini, daftar molekul aktif yang digunakan untuk melawan antraknosa telah diperluas secara signifikan, karena jelas bahwa infeksi kentang terjadi sepanjang musim tanam. Azoxystrobin tetap menjadi tolok ukur efektivitas melawan antraknosa, namun sebaiknya tidak digunakan lebih dari sekali per musim. Daftar fungisida terhadap antraknosa terluas terdaftar di Amerika Serikat (Tabel 14). Beberapa persiapan direkomendasikan untuk diterapkan pada alur selama penanaman, sisanya - selama musim tanam kentang.
Tabel 14. Daftar fungisida untuk mengendalikan antraknosa kentang, Amerika Serikat, 2021
Titik hitam | azoksistrobin | 6.0 – 15.5 fl oz Aframe, Persamaan, Quadris Flowable, Satori, Willowood Azoxy 2SC | 14 |
Jangan melebihi satu kali penggunaan fungisida Grup 11 sebelum bergantian dengan fungisida yang mengandung cara kerja berbeda Quadris dan Headline adalah Fungisida golongan 11.
Quadris Opti adalah Grup 11 dan fungisida golongan M. |
|
azoksistrobin + klorotalonil | 1.6 pt Quadris Opti | 14 | |||
azoksistrobin + difenokonazol | 8.0 – 14.0 fl oz Quadris Atas | 14 | |||
piraklostrobin | 6.0 – 9.0 fl oz Judul SC, EC | 3 | |||
azoksistrobin + benzovindiflupyr | 0.34 – 0.5 oz Elatus/1,000 kaki baris | 14 | Oleskan di alur saat penanaman dalam pita sempit di atas potongan benih. Jangan melebihi 9.5 oz/a sebagai aplikasi berpita. | ||
klorotalonil | 1.0 – 1.5 pt Bravo Weather Stik Echo 720 1.5 – 2.25 pt Bravo Zn, Equus 500 Zn 0.875 – 1.25 pon Echo 90DF, Echo Zn 0.9 – 1.36 pon Bravo Ultrex 82.5WDG, Equus DF |
7 7 7 7
|
Catat batasan penggunaan musiman pada label. Pelabelan saat ini untuk penggunaan tahunan produk klorotalonil di Wisconsin mengizinkan 11.2 pon ai/a produk Bravo (Ultrex, WeatherStik, Zn) (pendaftaran khusus W! berakhir pada 12/31/17, namun perpanjangan sedang dalam proses – harap periksa daftar pendaftaran khusus DATCP ) dan produk Echo 16.0 lb ai/a (Zn, 720, 90DF) (pendaftaran WI khusus berakhir pada 12/31/20). | ||
klorotalonil + simoksanil | 2.0 poin Ariston | 14 | Terapkan dengan interval 7 hingga 14 hari. Gunakan interval yang lebih pendek ketika tanaman tumbuh dengan cepat dan kondisi penyakit parah. | ||
simoksanil + famoksadon | 6.0 – 8.0 ons Tano | 14 | Mengelola beberapa penyakit lainnya. Ikuti pedoman manajemen resistensi. Untuk penindasan. | ||
difenokonazol | 5.5 – 7.0 fl oz MP Teratas | 14 | Ikuti pedoman manajemen resistensi. | ||
Titik Hitam (lanjutan) | fenamidon | 5.5 – 8.2 fl oz Alasan | 14 | Mengelola beberapa penyakit lainnya. Ikuti pedoman manajemen resistensi. Untuk penindasan. | |
fluopyram + pirimetanil | 11.2 fl oz Luna Tranquility (penekanan) | 7 | Mulailah aplikasi fungisida secara preventif. Jangan mengaplikasikan lebih dari 43.6 fl oz/a per musim. Jangan melakukan lebih dari 2 kali pengaplikasian fungisida Kelompok 7 atau 9 secara berurutan sebelum melakukan rotasi dengan fungisida dari kelompok yang berbeda. | ||
fluoxastrobin | 0.16 – 0.24 fl oz/1,000 ft baris Aftershock, Evito 480 SC 6.1 – 9.2 oz/a Tepera | 7 | Ikuti pedoman manajemen resistensi. | ||
flutolanil | 0.71 – 1.1 pon Moncut 70-DF | perawatan saat tanam | Semprotkan langsung secara merata di sekitar atau di atas potongan benih dalam pita berukuran 4 hingga 8 inci sebelum ditutup dengan tanah. | ||
fluksapiroksad + piraklostrobin | 4.0 – 8.0 fl oz Priaxor | 7 | Buat tidak lebih dari 3 aplikasi/a per musim. Terapkan tidak lebih dari 24.0 fl oz/a per musim. | ||
mancozeb | 0.4 – 1.6 qt Dithane F45 4F 0.5 – 2.0 pon Dithane M45, Penncozeb 80WP, Penncozeb 75DF 1.0 – 2.0 pon Dithane 75DF Rainshield NT, Koverall, Manzate 200 75DF |
3
3
3 |
Jangan melebihi total 11.2 lb ai/a EBDC per musim tanam. Bahan EBDC antara lain maneb, mancozeb, dan metiram. | ||
mefentriflukonazol | 3.0 – 5.0 fl oz Provysol | 7 | Jangan mengaplikasikan lebih dari 5.0 fl oz (0.13 lb) / per hektar per aplikasi. Jangan melebihi aplikasi pada 5.0 fl oz atau | ||
Titik Hitam (lanjutan) | 5 aplikasi pada 3.0 fl oz per hektar per tahun. | ||||
metakonazol | 2.5 – 4.0 ons Quash | 1 | Jangan membuat lebih dari 4 aplikasi per musim. Jangan males lebih dari 2 aplikasi berurutan. Jangan mengaplikasikan lebih dari 16.0 oz/a per musim. | ||
penthiopirad | 10.0 – 24.0 fl oz Vertisan | 7 | Jangan melebihi 72.0 fl oz/a per tahun. Lakukan tidak lebih dari 2 kali pengaplikasian Vertisan secara berurutan sebelum beralih ke fungisida dengan cara kerja yang berbeda. | ||
pidiflumetofen + fludioxonil | 9.2 – 11.4 ons cairan Miravis Prime | 14 | Penindasan titik hitam saja. Jangan menerapkan lebih dari 2 aplikasi per tahun melalui udara. Jangan menerapkan lebih dari 34.2 fl oz per hektar per tahun. | ||
piraklostrobin + metiram | 2.0 – 2.9 pon Cabrio Plus | 3 | Jangan melakukan lebih dari 2 aplikasi berurutan sebelum bergantian dengan fungisida non-Grup 11 atau M3. | ||
zoxamide + klorotalonil | 32.0 – 34.0 ons cairan Semangat | 7 | Jangan membuat lebih dari 2 aplikasi berurutan sebelum bergantian ke mode tindakan lain. |
Pada tahun 2023, bahan aktif pentachloronyltrobenzine, mandipropamide + difeconazole, azoxystrobin + mancozeb, mefentrifluconazole + pyraclostrobin juga disetujui di Amerika Serikat. Sebagian besar obat yang terdaftar dan kombinasi molekul aktif diizinkan untuk digunakan di Federasi Rusia untuk melawan penyakit busuk daun dan alternaria.
Penghancuran radikal antraknosa dengan menggunakan perlindungan fungisida tidak tercapai. Hal ini disebabkan oleh siklus perkembangan penyakit dan infeksi yang berkepanjangan dari berbagai sumber: melalui benih, tanah, dan tetesan udara. Meskipun demikian, penurunan tingkat perkembangan penyakit cukup signifikan, yakni mencapai setengahnya (Tabel 15). Hasil kentang pada latar belakang pertanian tinggi dengan pilihan perlindungan terbaik (perlakuan daun selain aplikasi pada tanah) meningkat sebesar 11-14 t/ha.
Tabel 15. Pengaruh aplikasi fungisida pada tanah dan daun terhadap perkembangan antraknosa, varietas Russet Burbank, 2012
Pengobatan JIKA = ke dalam alur F=daun @20 cm | Produk / ha | Visual % titik hitam- bagian bawah batang 10cm | C. coccodes pada DNA/g batang kentang | Hasil MT/ha |
Kuadris JIKA | 639 ml | 48.2 ab | 1798.4 ab | 58.68 ab |
Kuadris JIKA Mancozeb F | 639 ml 2.2 kg | 41.0 b | 900.7 cd | 62.52 yang |
Quadris JIKA Priaxor F | 639ml 426ml | 31.7 c | 622.1 d | 54.36 SM |
Priaxor JIKA | 480 ml | 50.0 yang | 1542.6 ab | 54.72 SM |
Priaxor IF Bravo ZN F | 480ml 1135ml | 35.8 SM | 892.6 cd | 54.60 SM |
Priaxor IF Quadris F | 480ml 639ml | 25.6 cd | 1332.0 ab | 60.00 ab |
Priaxor IF Judul F | 480ml 426ml | 28.3 cd | 789.0 cd | 65.76 yang |
Quadris JIKA Fontelis F | 639 ml 1.1 kg | 22.7 d | 595.1 d | 56.04 SM |
Vertisan IF Kuadris F | 1646ml 639 | 35.5 | 2249 yang | 57.36 SM |
Tidak diobati | 51.5 yang | 2072.9 yang | 51.96 c |
Data yang diperoleh (lihat Tabel 15) dengan jelas menunjukkan bahwa menambahkan fungisida strobirulin ke dalam tanah saat tanam saja tidak cukup untuk mengendalikan penyakit ini. Di Kanada, mereka bahkan menganggap opsi ini tidak tepat; fungisida terhadap antraknosa berdasarkan azoxystrobin, difeconazole, mefentrufluconazole, benzovindiflupyr dan fluopyram + pyrimethanil direkomendasikan untuk diterapkan hanya selama musim tanam. Faktanya, efektivitas melawan antraknosa harus diperhitungkan ketika membentuk sistem untuk melindungi kentang dari penyakit utama (alternaria, penyakit busuk daun) selama musim tanam. Juga telah ditetapkan bahwa penerapan azoxystrobin di akhir masa pertumbuhan musim, seminggu setelah pengeringan, memberikan efek tambahan yang signifikan dalam mengurangi kerusakan umbi.
Perlindungan bahan tanam dari antraknosa saat ini dianggap tidak efektif, meskipun banyak zat aktif (difeconazole, pyraclostrobin, imidazole) hampir menghancurkan inokulum pada permukaan umbi (diagram 16). Tapi ini efek jangka pendek, konsekuensinya akan hilang dengan cukup cepat, dalam waktu satu bulan, karena infeksinya juga terletak di dalam umbi.
Akhirnya. Bahaya penyakit antraknosa akhir-akhir ini meningkat secara signifikan, patogen ini telah menjadi masalah yang signifikan secara ekonomi. Jamur Colletotrichum coccodes, yang menyebabkan antraknosa pada kentang, merupakan patogen yang sulit diprediksi dan sulit dipahami. Infeksi awal bersifat laten. Infeksi pada akar, stolon, batang di bawah tanah dan di atas permukaan tanah dimulai pada awal musim tanam, namun gejala atau tanda yang jelas dari patogen (mikrosklerotia) mungkin tidak muncul pada tanaman sampai waktu panen. Umbi terinfeksi di lapangan tetapi mungkin tidak menunjukkan gejala yang jelas sampai pertengahan masa penyimpanan. Penyakit tidak menyebar dari umbi ke umbi selama penyimpanan jangka panjang, namun infeksi tersembunyi selama penyimpanan mulai muncul dan kerusakan umbi meningkat. Gejala antraknosa seringkali tidak jelas, tidak ambigu dan bertepatan dengan layu akibat Alternaria, verticillium, penuaan alami, kekurangan nitrogen, dll. Akibatnya, sulit untuk mengidentifikasi penyakit dan menilai konsekuensinya selama proses pertumbuhan. Dampak penyakit terhadap hasil kentang tidak dapat diprediksi, karena banyak kondisi dan faktor, baik biotik maupun abiotik, yang mempengaruhi bahayanya patogen tersebut.
Antraknosa sulit dikendalikan. Inokulum bertahan di dalam tanah selama bertahun-tahun, menyebar melalui bahan tanam dan hujan, dan infeksi berlanjut sepanjang musim tanam. Rotasi tanaman yang paling lama tidak membersihkan tanah, dan pergantian kentang dengan tanaman seperti wortel, bit, bawang bombay, sawi kuning, dan lobak (untuk benih) menyebabkan akumulasi infeksi. Meminimalkan kerusakan akibat antraknosa dimungkinkan melalui penggunaan penuh langkah-langkah organisasi dan teknologi serta penggunaan azoxystrobin dan sejumlah bahan aktif fungisida yang berkualitas dan anti-resisten. Perhatian khusus harus diberikan pada tingkat infeksi bahan benih dan tanah. Penting untuk melakukan pemupukan dan penyiraman kentang secara menyeluruh dan seimbang, segera memanen dan menyimpan produk dengan benar, secara efektif menekan gulma, termasuk kentang gulma, dan menggunakan efek fumigan dari pupuk hijau. Fungisida yang efektif harus diganti dan diterapkan saat menanam di tanah, pada paruh pertama musim tanam dan sebelum panen. Metode kimia untuk mengendalikan antraknosa harus menjadi komponen wajib dalam sistem perlindungan kentang modern.
Penulis materi: Sergey Banadysev, doktor ilmu pertanian. Sains, "Teknologi Doka-Gene"